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Recibido: 06/07/2023. Aceptado: 26/10/2023
Publicado el 20 de diciembre de 2023
Revista Ciencia y Tecnología (2023) 16(2) p 9 - 16 ISSN 1390-4051; e-ISSN 1390-4043
Ciencias Agrarias / Agricultural Sciences
Resumen
L
a alta incidencia del nematodo barrenador R. similis en
el cultivo de banano ha impulsado el empleo continuo de
nematicidas, como la única solución ecaz, pero poco sostenible
ante la microbiota y fertilidad de los suelos. Como alternativa
biológica la actividad biocontroladora de las PGPRs surten
el efecto supresor ante grandes poblaciones nematológicas.
Como blanco de estudio se evaluó el efecto de bioformulados
bacterianos en el control de R. similis y potenciador al
desarrollo de plántulas de banano cultivar Williams. Se empleó
cinco factores de estudio: Tres bioformulados elaborados con
diferentes componentes, los cuales se inoculó en combinación
4 cepas PGPRs Acinetobacter calcoaceticus BMR 2-12,
Serratia marcescens PM 3-8, Pseudomonas protegens
CHA0 y Enterobacter asburiae PM 3-14; Nematicida y Sin
PGPRs para sus evaluaciones biocontroladora y promotoras
en presencia del nematodo aplicado en poblaciones iniciales
entre 10,000 – 15,000 más cuatro repoblamientos de 8,000 –
10,000 en plántulas de banano. El factor biocontrolador del
Bioformulado-1 con cargas UFC/mL de 9.70X10
9
obtuvo
mayor efectividad en la presencia de R. similis reduciendo a
1,000/100 g de raíz, contrarrestando su incidencia de daños a
12.28 %. Así mismo el efecto de los Bioformulados mejoró
varios parámetros de crecimiento vegetal, implicando al
aumento de la altura de planta con 42.74 y 42.42 cm (Bio-
1 y 3); mayor número de hojas de 5.80 y 5.40 (Bio-1 y 2);
longitud radicular con 35.64 cm (Bio-3), revelando poseer
altos benecios hacia la agricultura sostenible.
Palabras clave: Microbiota; Acinetobacter calcoaceticus,
Pseudomonas protegens, UFC/mL, nematicida
Abstract
T
he high incidence of the boring nematode R. similis in
banana cultivation has prompted the continuous use
of nematicides, as the only eective solution, but not very
sustainable in the face of the microbiota and soil fertility; As
a biological alternative, the biocontrol activity of PGPRs has
a suppressive eect against large nematological populations.
As a study target, the eect of bacterial bioformulates on
the control of R. similis and enhancer on the development
of banana seedlings cultivar Williams was evaluated. Five
study factors were used: Three bioformulates made with
dierent components, which were inoculated in combination
with 4 strains PGPRs Acinetobacter calcoaceticus BMR
2-12, Serratia marcescens PM 3-8, Pseudomonas protegens
CHA0 and Enterobacter asburiae PM 3-14; Nematicide
and Without PGPRs for their biocontrol and promoter
evaluations in the presence of the nematode applied in initial
populations between 10,000-15,000 plus four repopulations
of 8,000–10,000 in banana seedlings. The biocontrol factor
of Bioformulated-1 with CFU/mL loads of 9.70X10
9
obtained
greater eectiveness in the presence of R. similis, reducing to
1, 000/100 g of root, counteracting its incidence of damage to
12.28 %. Likewise, the eect of the Bioformulated products
improved various plant growth parameters, involving an
increase in plant height with 42.74 and 42.42 cm (Bio-1 and
3); greater number of leaves of 5.80 and 5.40 (Bio-1 and 2);
root length with 35.64 cm (Bio-3), revealing to have high
benets towards sustainable agriculture.
Keywords: Microbiota; Acinetobacter calcoaceticus;
Pseudomonas protegens, CFU/mL, nematicide.
https://doi.org/ 10.18779/cyt.v16i2.705
Efecto de bioformulados bacterianos como controladores de Radopholus similis y potenciadores del
desarrollo de plántulas de banano (Musa acuminata) cultivar Williams
Eect of bacterial bioformulates as controllers of Radopholus similis and enhancers of banana seedling development
(Musa acuminata) cultivar Williams
Cristhian John Macías Holguín
1
, Flavio Cesar Valarezo Padilla
1
, Dayanara Nicolle Tapia Quintana
1
, Hayron Fabricio
Canchignia Martínez
1,2
, Ángel Virgilio Cedeño Moreira
1
, Erick García Intriago
1
1
Universidad Técnica Estatal de Quevedo, Ecuador.
2
Facultad de Ciencias Agropecuarias.
Autor de correspondencia: cristhian.macias2016@uteq.edu.ec
Macías et al., 2023
2023. 16(2): 9-16
10 Ciencia y Tecnología.
Tabla 1. Rizobacterias productoras de metabolitos antagónicos
Organismo Cepas
Metabolitos antagónicos
Sideróforos AIA
†
PR
†
HCN
†
Prn
†
DAPG
†
Acinetobacter calcoaceticus BMR 2-12 + +
Serratia marcescens PM 3-8 + + +
Pseudomonas protegens CHA0 + + + + + +
Enterobacter asburiae PM 3-14 + + + +
†
Productoras de metabolitos secundarios: PR-Proteasa, HCN-cianuro de hidrogeno, Prn-pirrolnitrina, ácido Indol acético (AIA)
(Canchgnia et al., 2018).
Introducción
El banano es una fruta tropical de valor nutricional que
contiene carbohidratos, bra, vitaminas A, B6, C, potasio,
fósforo y calcio. Promueve alta rentabilidad en el Ecuador
con un alto margen de ingresos económicos (Cabrera et al.,
2020). Durante el año 2020 se exportaron 380,498 millones de
cajas de 18.14 kg destinadas a Estados Unidos, Asia Oriental,
Rusia y Reino Unido (Santo et al., 2022). Lo que Representa
el 27% de las exportaciones agrícolas del país y el 22% a nivel
mundial (Vaca et al., 2020). La producción de banano en zonas
subtropicales ha sido vulnerable por una serie de enfermedades
como hongos, nematodos, marchitez bacteriana y virus que
afectan a cualquier tejido de la planta (Manzo-Sánchez et al.,
2014). La diversidad de nematodos toparásitos de mayor
impacto son Radopholus similis y Meloidogyne spp. (Vanegas
et al., 2023), que se caracterizan por su alimentación multisitio
desde las células del córtex, endodermis, periciclo, hasta el
parénquima vascular (Riascos, 2014). Ingresan al sistema
radicular creando un método de entrada para Fusarium solani
y Rhizoctonia sp. y predominan en las lesiones de las raíces
(Stover, 1966). Los daños ocasionados son mayores que el
ataque de insectos con pérdidas en producción entre el 20 y
100% del banano (Singh et al., 2015; Nyang’au et al., 2021).
La alta incidencia de daños provocados por R. similis
reduce el funcionamiento de las raíces provocado por su
estilete que ingresa a nuevas células corticales para destruir
la pared celular del huésped y migrar a nuevos sitios ricos en
azúcares lo que provoca el volcamiento de la planta (Chitamba
et al., 2014; Singh et al., 2015), Su reproducción anmixis en
el interior de la raíz permite la oviposición aproximadamente
de 8000 huevecillos en un periodo de desarrollo de 20
a 25 días (Kosma et al., 2011). El control de R. similis en
grandes plantaciones de banano se realiza con nematicidas
sintéticos con dos a cuatro aplicaciones al año (Chabrier y
Queneherve, 2003). El empleo continuo y aumento de dosis
de nematicidas organofosforados y carbofurados genera
deciencias nutricionales, baja descomposición de la materia
orgánica y microfauna del suelo que inducen antagonismo
hacia patógenos infecciosos (Kalay et al., 2023). El interés
de utilizar comunidades microbianas para el control de
nematodos toparásitos está aumentando (Crespo-Clas et
al., 2023). Los nematicidas fúngicos y bacterianos ocupan
un lugar destacado entre otros agentes de biocontrol (Abd y
Askary, 2018). El empleo de rizobacterias (PGPR´s) por sus
siglas en inglés “Plant Growth Promoting Rhizobacteria”
promueven el desdoblamiento y asimilación de nutrientes
que facilita su movilidad dentro de la planta (Tsavkelova et
al., 2006), jan nitrógeno por medio de genes especícos
nif (Döbereiner, 1992) y sintetizan tohormonas (Fuentes-
Ramírez y Caballero-Mellado, 2005). Las rizobacterias
inhiben la población de nematodos toparásitos por la
producción de varias enzimas hidrolíticas como proteasas,
colagenasas, quitinasas, toxinas y subproductos metabólicos
que se han relacionado con el efecto nematicida (Kumar et
al., 2019). Por ello las PGPRs establecen una alta eciencia
biocontroladora y bioestimulante muy similar a los productos
químicos, siendo un factor importante involucrado en la
degradación de diferentes constituyentes químicos de los
nematodos en distintas etapas de desarrollo. La presente
investigación tiene como objetivo evaluar el efecto de los
bioformulados (PGPR´s) como agente supresor a R. similis
y bioestimulante sobre el desarrollo radicular de plántulas de
banano (Musa acuminata) cultivar Williams.
Materiales y métodos
La investigación se ejecutó en el Laboratorio e invernadero
de Biotecnología Molecular de la Universidad Técnica Estatal
de Quevedo (UTEQ), localizado en la Finca Experimental
“La María” ubicado en el Km 7 1/2 de la Vía Quevedo – El
Empalme, cantón Mocache, ubicado en 1°20›30» de latitud
Sur y 79°28’30” de latitud Oeste, y a una altura de 75 msnm.
Establecimiento del material vegetal
Se utilizaron vitroplantas de banano cultivar Williams
elaboradas en el laboratorio de cultivo de tejido de la UTEQ.
Las vitroplantas de un mes de edad se transplantaron en
macetas de 13 x 11 m, que contenían un sustrato de textura
franco arcilloso más turba, a una proporción (2:1), el cual se
esterilizó por 30 d mediante la técnica de solarización.
Efecto de bioformulados bacterianos como controladores de Radopholus similis y potenciadores del desarrollo de plántulas de banano (Musa acuminata)
cultivar Williams
2023. 16(2): 9-16 11Ciencia y Tecnología.
Preparación del pre-inóculo y bioformulados
Del banco de germoplasma del laboratorio de Microbiología
de la UTEQ. Se escogieron cuatro rizobacterias PGPRs
(Tabla 1). Las rizobacterias se incubaron a 150 rpm por 48
h en un agitador orbital, en 100 mL de King B líquido [(g/L)
Peptona 20 gr, fosfato de potasio 1.5 gr, sulfato de magnesio
1.5 gr, glicerol 15 mL/L] (King et al., 1954). Se recuperó
25 mL de cada bacteria que contiene 1.2X10
8
UFC/mL,
incorporadas a los bioformulados que contienen [Carbonato
de calcio, harina de machica, quitina coloidal, carboximetil
celulosa y melaza (Bioformulado-1)], [Zeolita, ácido
Etilendiaminotetraacético, quitina coloidal, acetato de potasio
y melaza (Bioformulado-2)] y [Carbón vegetal, harina de soya,
aminoácidos, jador agrícola y melaza (Bioformulado-3)]; la
incubación del consorcio bacteriano fue de 48 h.
Inoculación de bioformulados en plántulas de banano
El contenido microbiano se elaboró al 20% en volúmenes de 8
L de H
2
O-2 L de consorcio bacteriano en dosis de 250 mL por
planta. Además, se empleó un control químico (Nematicida)
producto comercial Nakar (Benfuracarf 20%) en volúmenes
de 10 L de H
2
O-12 mL de nematicida en dosicación de 50
mL y un control absoluto (agua destilada estéril). Durante la
investigación se aplicó los bioformulados y nematicida a los
15 y 30 días después del transplante. Todos los tratamientos
tuvieron cinco réplicas y cada una con tres unidades
experimentales.
El experimento se realizó bajo un Diseño Completamente
al Azar (DCA), todas las observaciones fueron sometidas al
análisis de varianza y las medias de los tratamientos fueron
separados por procedimiento de comparación múltiple de
Tukey, al nivel de signicancia de (P≤0.05), empleando el
software Statgraphics.
Obtención del inóculo de R. similis
Se recolectaron varias muestras de raíces infectadas por
nematodos de plantaciones de banano. El aislamiento de R.
similis se desarrolló mediante la técnica de Stmerdin (1963).
Se pesaron 100 gr de raíces infectadas cortadas de forma
transversal en trozos de 1 cm usando una balanza analítica
Explorer™ Semi Micro Marca, Ohaus®, los segmentos se
mantuvieron en reposo matraces Erlenmeyer con 500 mL
de agua destilada estéril por 5 min, para luego ser ltrada en
tamices con mallas de 500 y 90 μm. El contenido de la criba de
90 μm se depuro por medio de un papel ltro recuperando la
muestra en un vaso precipitado de 50 mL, cediendo al rescate
del líquido de alta densidad por decantación durante 48 - 72
h. La identicación de R. similis se efectuó en volúmenes
de 300 μL sobre un vidrio reloj empleando un microscopio
OLYMPUS (ocular 10X y objetivo 40X) para la caracterización
morfológica. Se inocularon 250 mL de solución poblada de
nematodos de 10,000 – 15,000 (huevos y juveniles), a los 30
d se aplicaron cuatro repoblamientos de 8,000 – 10,000 cada 7
d en plantaciones de banano aclimatadas de 3 meses de edad.
Determinación del contenido bacteriano PGPRs a nivel
edáco
Se recuperó 1 g de suelo a una profundidad de 10 cm,
resuspendidas en 9 mL de agua destilada estéril con agitación
a 120 rpm por 10 min. La toma de muestra se realizó a los
30, 60 y 90 días después de la inoculación (ddi). Se realizó
diluciones seriadas (1:9) y se plaquearon 10 μL en medio
King B sólido [(g/LPeptona 20 gr, fosfato de potasio 1.5
gr, sulfato de magnesio 1.5 gr, glicerol 15 mL/L, 15 Agar)],
suplementado con chloramphenicol (13 μg/mL), ampicilina
(40 μg/mL) (Bauer et al., 1996). Colocadas en incubación a
27 °C por 48 h. El conteo UFC/mL se valoró por rangos de:
Mínimo 25 UFC – Máximo 250 UFC (Unidad de Formadores
de Colonias).
Evaluación del efecto promotor y biocontrolador de las
cepas PGPRs
El efecto promotor de las PGPRs se determinó mediante las
variables morfológicas, en donde se evaluaron el número
de emisión foliar (N°), longitud radicular (cm), número de
hojas (N°) y altura de la planta (cm). Todas las variables se
evaluaron en 15 plantas por tratamiento. Por otra parte, se
determinó la incidencia de daños y la cantidad poblaciones
del nematodo R. similis mediante un muestreo destructivo
de 6 submuestras radiculares por cada tratamiento para su
respectivo análisis nematológico, analizado por la empresa
privada In-Nema (Servicio de análisis y manejo de insectos y
nematodos del agro).
Resultados y discusión
Carga bacteriana de los consorcios en bioformulados
La combinación de A. calcoaceticus BMR 2-12, S. marcescens
PM 3-8, P. protegens CHA0, E. asburiae PM 3-14 inoculados
en diferentes bioformulados, mediante el recuento en placas de
King B aumenta concentración UFC/mL del Bioformulado-1,
con cargas aproximadas de 9.70x10
9
UFC/mL (Figura 1).
Generan capacidades extracelulares en la producción de
metabolitos secundarios demostrando que los componentes
empleados en la formulación como medio de cultivo
alternativo favorecen el crecimiento celular y adaptación de
las colonias bacterianas en un sistema de biorreactor aeróbico.
De hecho, Mendoza et al. (2008), menciona que durante la
fermentación aeróbica bacteriana con PGPRs en especial
Streptomyces avermitilis del género Actinomycetes producen
diversos compuestos bioactivos, entre uno de ellos abamectina
que actúa sobre el nematodo por contacto e ingestión.
La inuencia de los componentes empleados permite
aumentar o disminuir la concentración celular en el medio
de crecimiento, en especial la regulación del pH que facilita
el incremento de bacterias anaeróbicas, siendo de gran
interés que los compuestos orgánicos durante la fase de
latencia produzcan una disminución de pH en los medios de
crecimiento (Liu y Shen, 2004a). El uso de quitina coloidal
Macías et al., 2023
2023. 16(2): 9-16
12 Ciencia y Tecnología.
aportados a los Bioformulados-1 y 2 mejora el contenido
celular durante la fermentación, en donde este material es
rico en nitrógeno que podría favorecer a la activación de la
biomasa microbiana, producción de sustancias promotoras y
contribuir al crecimiento de las plantas (Castro et al., 2011).
Figura 1 .Carga bacteriana de los bioformulados. Los
valores con letras similares no presentan diferencias
estadísticas signicativas (Tukey, P≤0.05), Las barras
indican la DE individual para tratamiento (±)
Determinación del contenido bacteriano de las PGPRs a
nivel edáco.
La alta efectividad de las rizobacterias PGPRs en contacto
directo con el sistema radicular permite la colonización
masiva y cargas bacterianas de gran importancia en la
estimulación de procesos metabólicos de la planta. Se observó
que el Bioformulado-1 presenta mayor contenido bacteriano e
incide en la estabilidad celular a los 30, 60 y 90 d; evaluados
con cargas UFC/mL de 1.26X10
10
, 1.38X10
10
y 1.07X10
10
. El
efecto del nematicida Nakar indujo menores concentraciones
UFC/mL
de 1.87X10
7
a inicios de la evaluación, decayendo el
contenido microbiano a los 60 y 90 d con cargas bacterianas de
1.59X10
6
y 3.00X10
6
(Figura 2). Lo que puede estar asociada
a la limitación libre en suelos controlados bajo aplicación de
fertilizantes sintéticos. La colonización masiva favorece el
crecimiento, protección y comunicación entre las células de la
raíz con los microorganismos benécos (Amogou et al., 2019;
Landa et al., 2002; Mavrodi et al., 2006). La estabilidad y
permanencia bacteriana del Bioformulado-1 durante los 30, 60
y 90 días en las plántulas de banano Williams, promueve mayor
desarrollo y protección radicular, en donde las comunidades
bacterianas se asocian continuamente a las raíces por la
exudación basal (McDougal y Rovira, 1970) seguidamente de
la cubierta de las raíces meristemáticas (Norton et al., 1990).
Las concentraciones bacterianas generan un buen estatus entre
microorganismos-planta, sin embargo, los Bioformulados-2 y
3 inuyen en la permanencia durante la evaluación, formando
un interfaz biológico entre la raíz y el suelo. La mayoría de
las bacterias se organizan en rizodepósitos, que puede inuir
en la movilidad en los suelos (Jones et al., 2004a). Los
compuestos usados para el crecimiento bacteriano es de gran
inuencia en la persistencia de las bacterias en suelo, en tal
sentido el aporte de aminoácidos al Bioformulado-3 promovió
estabilidad durante el periodo de evaluación con cargas
coloniales inferiores del Bioformulado-1 y 2, sin embargo por
juicio propio, al parecer estableció conexiones con las raíces
aprovechando los exudados que contienen aminoácidos,
azúcares y ácidos grasos (Jones et al., 2009b) en relación que
los compuestos quimiotaxis permiten a una especie bacteriana
ser competitiva en la rizósfera por el contrario al efecto de
factores ambientales sobre la inuencia en la microbioma
(Dennis et al., 2010). La colonización y motilidad de bacterias
exógenas en suelos tratados con nematicida genera el
declive al establecimiento, limitando a la dependencia de los
componentes esenciales para el crecimiento microbiano (De
Weert et al., 2006). El efecto nematicida disminuye lentamente
entre los días 30 y 60 acotando al papel predominante de la
composición microbiana en la rizósfera (Liu et al., 2020b). A
30 días las plantas tratadas con PGPRs colonizan la rizosfera y
el sistema radicular del Banano bajo la presencia de R. similis
que incita al debilitamiento radicular, en lo que la mayoría
de los exudados se liberan de los ápices afectando a la
estructura general de comunidades bacterianas (Dennis et al.,
2010) en el rizoplano las agrupaciones microbianas revisten
heterogéneamente, en cambio en los ápices de las raíces
ocupan grupos en proporciones limitadamente pequeñas.
Figura 2. Cinética de crecimiento a los 30, 60 y 90 d,
Bio-1(Bioformulado-1), Bio-2(Bioformulado-2), Bio-
3(Bioformulado-3), Nematicida y Sin PGPRs. Los valores
con letras similares no presentan diferencias estadísticas
signicativas (Tukey, P≤0.05), Las barras indican la DE
individual para tratamiento (±)
Efecto promotor vegetal de las PGPRs en presencia de R.
similis
Se reportó diferencia estadistica para los tratamientos
evaluados sobre la variable de número hojas, bajo aplicaciones
microbianas se destaca que los Bioformulados-1 y 2 presentan
mayores promedios de números de hojas con 5.80 y 5.40
respectivamente presente en plántulas de banano Williams.
Las plantas tratadas con nematicida presentan un número bajo
de hojas en comparación ante los demás tratamientos (Figura
3A). A diferencia de las caracteristicas agronomicas de altura
planta, longitud radicular y emision foliar no se observo
diferencia signicativa entre los tratamientos. Sin embargo
la aplicación del bioformulados-1 a nivel edáco obtiene los
mayores promedios de altura de planta y emision foliar que
Efecto de bioformulados bacterianos como controladores de Radopholus similis y potenciadores del desarrollo de plántulas de banano (Musa acuminata)
cultivar Williams
2023. 16(2): 9-16 13Ciencia y Tecnología.
fueron en promedio 42.74 cm y 0.43 lo que demuestra un efecto
positivo sobre las características agronómicas como altura, del
banano Williams en presencia de R. similis (Figura 3B-C). En
comparación a la aplicación del bioformulado-3 se obtuvo los
mayores promedios sobre incremento de la longitud radicular
con 35.64 cm y los Bioformulados-1 y 2 con 31.12 y 31.94
cm, valores que predominan ante aplicaciones de nematicidas
que poseyó inferioridad radicular de 30 cm (Figura 3D). En
donde se puede mencionar que el uso de la fermentación
aeróbica con melaza posee componentes como glucosa,
sacarosa y fructosa generó adaptación celular relacionado a
las aplicaciones edácas (Ryan et al., 2001).
Los géneros bacterianos como: Azospirillum spp.,
Herbaspirillum spp., Burkholderia spp., Gluconacetobacter
spp., Derxia spp., Beijerinckia spp. y Azotobacter spp. ejercen
un efecto promotor que se atribuye al mejoramiento del estado
morfológico y estimulación de la planta lo que mejora la
fertilidad del suelo en presencia del micronutriente molibdato
de sodio precursor que activia el gen (nif) para la jación de
nitrógeno atmosférico (Chen et al., 2001; Garrido et al., 2010).
La eciencia de los nematicidas disminuye las poblaciones e
incidencia de daños por R. similis y a su vez perjudica a la
disminución de la materia orgánica y décit nutricional, sin
embargo, el empleo de Bioformulados ofrece resultados igual
o mejor que controles químicos, donde Khalilian et al. (2002)
sostiene que el aporte de abonos orgánicos reduce poblaciones
nematológicas por efecto del aumento de comunidades
bacterianas.
Figura 3. Parámetros morfológicos. A) Altura de la planta, B) Número de hojas, C) Longitud radicular, D) Emisión
foliar. Los valores con letras similares no presentan diferencias estadísticas signicativas (Tukey, P≤0.05), Las barras
indican la DE individual para tratamiento (±)
B
A
D
C
Macías et al., 2023
2023. 16(2): 9-16
14 Ciencia y Tecnología.
Efecto antagonista de las PGPRs hacia R. similis
La aplicaciones de los tres Bioformulados reduce la
permanencia de las poblaciones de nemtados con 1,000,
2,000, y 4,000 cada 100 g de raíz. La utilización de nematicida
no controla la total poblacion de 5,000 nematodos/100 g.
En cuanto al efecto sin inoculaciones de PGPRs induce al
libre movimiento y reproducción dentro del tejido vegetal,
en donde se contabilizó 13,000 nematodos/100 g (Tabla
2). La utilización de las rizobacterias (PGPR´s) permiten
una amplia protección al desarrollo radicular de Banano y
ayudan a la permanencia de la microbiota rizobacteriana por
la producición de compuestos bioactivos hacia el control de
enfermedades topatogneas como R. similis.
Las aplicaciones de los Bioformulados-1 y 2 registran
menor incidencia de daños provocados por el nematodo
barrenador con 12.28% y 14.18% respectivamente a
diferencia de utilizar nematicida sintetico redujo la incidencia
de daños ocasionados por R. similis con el 11.37 % (Figura
4). Autores como Almaghrabi et al. (2013) y Prashar et al.,
(2014) reportan que Bacillus spp. y Pseudomonas spp. son
productoras de enzimas de ácido salicílico, ácidos orgánicos,
ACC desaminasa. De acuerdo con Chaves et al. (2009),
establece que P. protegens CHA0 tiene mayor actividad
antagonista hacia R. similis y reduce la eclosión de huevos de
otros nematodos tales como: Meloidogyne spp. y M. javanica.
El uso del consorcio bacteriano (BMR 2-12, PM 3-8,
CHA0 y PM 3-14) en los bioformulados poseen la capacidad
de secretar metabolitos antagónicos tales como PR (Proteasa),
HCN (Cianuro de hidrógeno) y Prn (Pirrolnitrina); cepas
productoras de PR (PM 3-8 y PM 3-14),cepas productoras de
HCN (PM 3-8 y PM 3-14) y cepas productoras de Prn (BMR
2-12 y PM 3-14); cabe mencionar que P. protegens (CHA0)
sintetiza diversos antibióticos como 2-4 DAPD, Plt y Prn.
(Martínez et al.,2018).
Tabla 2. Análisis nematológico de raíces de banano
Tratamientos Índice de daños (%) Población nematológica de R. similis/ 100 g de raíz
Bio-1 12.28 1,000
Bio-2 14.18 2,000
Bio-3 16.59 4,000
Nematicida 11.37 5,000
Sin PGPRs 15.77 13,000
Figura 4. Inuencia al empleo de Bioformulados al incremento de biomasa radicular y protección ante las afecciones de
R. similis. A) Bioformulado-1. B) Bioformulado-2. C) BIoformulado-3. D) aplicación de Nematicida. E) Control
D
A
B
E
C
Conclusiones
La combinación de A. calcoaceticus BMR 2-12, S. marcescens
PM 3-8, P. protegens CHA0, E. asburiae PM 3-14 incubados en
los componentes del Bioformulado-1 favorece el incremento
celular, demostrando mayores efectos promotores, estabilidad
celular y antagonismo hacia R. similis, disminuyendo
poblaciones nematológicas y la incidencia de daños.
Referencias bibliográcas
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Copyright (2023) © Cristhian Macías Holguín, Flavio Valarezo Padilla, Dayanara Tapia Quintana,
Hayron Canchignia Martínez, Ángel Cedeño Moreira, Erick García Intriago
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